蒽酮比色法

蒽酮比色法是一個快速而簡便的定糖方法。蒽酮可以與游離的己糖或多糖中的己糖基、戊糖基及己糖醛酸起反應,反應後溶液呈藍綠色,在620nm處有最大吸收。本法多用於測定糖原的含量,也可用於測定葡萄糖的含量。

測糖試驗,多糖含量,

測糖試驗

一 實驗目的 掌握蒽酮比色法測糖的原理和方法
二 實驗原理 蒽酮可以與游離的已糖或多糖中的已糖基、戊糖 基及已糖醛酸起反應,反應後溶液呈藍綠色,在620nm處有最大吸收。
三 實驗器材及試劑
馬鈴薯乾粉
可調試移液器或移液管
可見分光光度計(723型)
水浴鍋
電爐子
蒽酮試劑:取2g蒽酮溶解到80%H2SO4中,以80%H2SO4定容到1000ml,當日配製使用。
標準葡萄糖溶液(0.1mg/ml):100mg葡萄糖溶解到蒸餾水中,定容到1000ml備用。
四、操作
1.製作標準曲線
取7支幹燥潔淨的試管,按表1順序加入試劑,進行測定。
以吸光度值為縱坐標,各標準溶液濃度(mg/ml )為橫坐標作圖得標準曲線。
表1 蒽酮比色法定糖——標準曲線的製作
沸水浴中準確煮沸10min,取出用流水冷卻,室溫放10min,於620nm處比色
葡萄糖濃度(mg/ml)
2.樣品含量的測定
樣品液的製作:
精確稱取馬鈴薯乾粉0.1g置於錐形瓶中—→加入30ml沸水—→沸水浴30min(不時搖動)—→取出,
3000rpm離心10min(或過濾)—→反覆洗滌殘渣2次—→合併濾液—→冷卻至室溫—→定容到50ml的錐形瓶中—→再從中取出1ml,再定容到10ml的容量瓶中
樣品液的測定:
(1)取4支試管,按照表2加樣(加蒽酮時需要冰水浴5min冷卻)
表2 蒽酮比色法定糖——樣品的測定
(2)加樣冷卻完成後置沸水中煮沸10min,取出流水冷卻放置10min,620nm處比色測量各管OD值。
(3)以1號試管作為調零管,2、3、4號管的OD值取平均後從標準曲線上查出樣品液相應的含糖量。
3.結果計算:
C×V
w = ————×100%
m,
式中w:糖的質量分數(%)
C:從標準曲線中查出的糖質量分數(mg/ml)
V:樣品稀釋後的體積(ml)
m:樣品的質量(ml)
原理
植物在個體發育的各個時期,代謝活動也發生相應的變化,碳水化合物的代謝也不例外,其含量也隨之發生變化。了解可溶性糖含量的變化,在生理上和實踐上都有重要的意義。這裡介紹的是蒽酮比色法,糖在硫酸的作用下生成糖醛,糖醛再與蒽酮作用,形成一種綠色的絡合物,顏色的深淺與糖含量有關。方法簡便,但沒有志一性,對於絕大部分的碳水化合物都能與蒽酮反應,產生顏色。
儀器藥品
721型分光光度計    分析天平
研缽  恆溫水浴鍋
燒杯  容量瓶
三角燒瓶  大試管
移液管  漏斗
乙醚  草酸鈉
飽和醋酸鉛
葡萄糖標準溶液:稱取已在80℃烘箱中烘至恆重的葡萄糖100mg,配製成500ml溶液,即得每ml含糖為200μg的標準溶液。
蒽酮試劑:稱取1g經過純化的蒽酮,溶解於1000ml稀硫酸中即得。硫酸溶液由760ml濃硫酸(比重1.84)稀釋成1000ml而成。
操作步驟
1.可溶性糖的提取
稱取重約5g的新鮮植物葉子,於研缽中乙醚少許,仔細研磨成均勻的漿狀物,倒入燒杯中,用70℃熱水洗滌研缽,洗液併入燒杯中,再加蒸鎦水30─40ml。將燒杯放在水浴鍋中加熱,保持溫度70─80℃約半小時,冷卻後1滴1滴地加入飽和中性醋酸鉛,以除去蛋白質,直至加入醋酸鉛時不再形成白色沉澱為止。然後將此混合物連同殘渣一併洗入100ml容量瓶中,加水至刻度,充分振盪。以乾燥漏斗將濾液過濾於一乾燥的三角燒瓶中,瓶中事先放有少量(約0.2─0.4g)草酸鈉粉末,以除去濾液中過量的醋酸鉛,使生成草酸鉛沉澱,再行過濾,所得的透明濾液即為可溶性糖提取液。
2.顯色及比色
吸取上述糖提取液1ml,放入一乾潔的試管中,加蒽酮試劑5ml混合之,於沸水浴中煮沸10分鐘,取出冷卻,然後於分光光度計上進行測定,波長為625nm,測得吸光度。從標準曲線上查得濾液中的糖含量(或經直線回歸公式計算),然後再行計算樣品中含糖百分數。
3.繪製標準曲線
取標準葡萄糖溶液將其釋成一系列不同濃度的溶液,濃度分別為每ml含糖0、5、10、20、30、40、50、60、70、80、90、100μg。按上述方法分別測得其吸光度,然後繪製A026-糖濃度曲線,或進行直線回歸求得直線方程。
4.計算樣品中含糖百分數(% )
設V為植物樣品稀釋後的體積(ml)
C為提取液的含糖量(μg/ml)
W為植物組織鮮重(g)
則得計算式如下: %=C×V/(W×1000000)×100%

多糖含量

[a]多糖含有幾百個或更多殘基,但只有一個還原基團,因此它的還原能力極弱,對於他們的測定,應先將它們用酸水解成單糖組分。
蒽酮比色法是一種快速而簡便的定糖方法,糖類遇濃硫酸脫水生成糠醛及其衍生物,該衍生物與蒽酮發生反應,反應後溶液呈藍綠色,於620nm處有最大吸收。因此可用此方法測定多糖含量。
[b]試劑
2g/L蒽酮試劑:溶解2g蒽酮於1L濃硫酸(98%的濃硫酸)中,當日配製使用。
0.01g/L葡萄糖溶液(可加幾滴甲苯作防腐劑)
0.1g/L糖元溶液
[c]實驗器材
試管及試管架 吸量管(1ml,5ml) 恆溫水浴箱(100℃) 製冰機 紫外分光光度計 滴管 白瓷板
製作標準曲線
準確稱取0.1g葡萄糖(分析純),溶解並用蒸餾水定容至100ml後,分別取出1ml,2ml,3ml,4ml,5ml分別加入到50的容量瓶中,並用蒸餾水定容到50ml,配成濃度分別為20ug/ml,40ug/ml,60ug/ml,80ug/ml,100ug/ml,各取1ml於試管中,再加入3ml的蒽酮試劑,迅速浸入冰水中冷卻,待幾支試管均勻加完後,一起浸入100℃恆溫水浴箱中,為防止水分蒸發,應在試管口上加蓋一個玻璃球或者加一個塞子,自溫度重新升至100℃起計時,準確保溫10min後取出,用流動水冷卻,然後,於室溫中平衡片刻(約10min左右),在分光光度計上,波長620nm處,用0.5cm厚度的比色杯,以空白管做對照空白(此處的空白是指不加葡萄糖的蒽酮試劑,其他反應條件都一致),進行比色。
既得標準曲線。
如下表格
編號
1
2
3
4
5
6
體積ml
1(蒸餾水)
1
1
1
1
1
濃度ug/ml
0
20
40
60
80
100
[d]樣品測定
如上述條件一致,但要記得用除去蛋白質的樣品溶液進行測定,否則會影響測定結果。
樣品含糖量計算:
C×V2×D
樣品含糖量(%)=----------------------×100%
W×V1×10
其中C----在標準曲線上查出的糖含量(ug),
V2---提取液總體積(ml)
V1---測定時取用體積(ml)
D-----稀釋倍數
W-----樣品重量(g)
10-----樣品重量單位g換算成ug的倍數
注意事項:
1.一定要注意溫度要控制在100℃
2.從100℃開始準確計時10min,然後迅速冷卻,於室溫中平衡10min.
3.蒽酮要注意避光保存。配置好的蒽酮試劑也應注意避光,當天配製好的當天使用。
4.試管要保證乾燥清潔,無殘留水滴。

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